Płytki Petriego z próbkami z materiału producenta dotyczącego badań koncentratów BIFIDO

Badania BIFIDO in vitro — jak rozumieć wyniki laboratoryjne?

Zdjęcie z publikacji producenta. Obserwacje laboratoryjne in vitro nie są dowodem skuteczności klinicznej.

Siedem wariantów koncentratów BIFIDO, szesnaście bakterii i dwa grzyby. Taki zakres obejmuje raport przygotowany w 2024 roku przez doc. dr Renatę Žvirdauskienė z Wydziału Technologii Chemicznej Uniwersytetu Technologicznego w Kownie (KTU). Badanie sprawdzało, jak próbki koncentratów wpływały na wzrost wybranych drobnoustrojów na podłożach laboratoryjnych.

Najważniejsza obserwacja: w zestawieniu odnotowano strefy zahamowania wzrostu dla 15 z 16 badanych bakterii; dla Helicobacter pylori wszystkie wartości wynosiły zero. Wyniki różniły się między wariantami i mikroorganizmami. Poniżej przedstawiamy pełny zakres badania, konkretne liczby oraz zdjęcia z raportu — bez konieczności samodzielnego czytania dokumentu technicznego.

Co zbadano i kto przygotował raport?

  • Jednostka: Wydział Technologii Chemicznej KTU.
  • Autorka raportu: doc. dr Renata Žvirdauskienė.
  • Rok: 2024.
  • Materiał: siedem wariantów fermentowanych koncentratów BIFIDO.
  • Rodzaj badania: doświadczenie in vitro, czyli poza organizmem człowieka.

Siedem wariantów w doświadczeniu

  1. Owsiany.
  2. Ryżowy.
  3. Pomarańczowy — próbka nr 3, w tabeli wyników opisana jako pomarańcza–mango.
  4. Malinowy.
  5. Aroniowy.
  6. Miodowy z imbirem i limonką.
  7. Żytni.

Wariant aroniowy jest planowany do wprowadzenia do oferty BIFIDO w Polsce. Tutaj opisujemy jego udział w badaniu z 2024 roku. Aktualną dostępność poszczególnych produktów pokazuje sklep BIFIDO.

W raporcie występują dwie nazwy próbki nr 3: w opisie metody „pomarańczowy”, a w tabeli 2 „pomarańcza–mango”. Na wykresach zachowujemy numer próbki i zaznaczamy tę różnicę. Wyniki odnoszą się do próbek objętych badaniem, a nie automatycznie do każdej obecnej receptury lub partii.

Jakie bakterie i grzyby uwzględniono?

Raport podaje nazwy mikroorganizmów oraz oznaczenia szczepów z kolekcji ATCC i DSM. Dwa grzyby pochodziły z kolekcji LAMMC. Oznaczenia pomagają dokładnie określić zakres doświadczenia; nie są certyfikatem produktu.

16 bakterii i 2 grzyby — oznaczenia przytoczone z raportu
MikroorganizmOznaczenie szczepu / kolekcja
Micrococcus luteusATCC 9341
Bacillus cereusATCC 11778
Klebsiella pneumoniaeATCC 700603
Enterobacter cloacaeATCC 23355
Staphylococcus epidermidisATCC 12228
Bacillus subtilis subsp. spizizeniiATCC 6633
Salmonella choleraesuisATCC 10708
Citrobacter freundiiATCC 43864
Escherichia coliDSM 19683
Salmonella agonaATCC 700720
Listeria monocytogenesATCC 13932
Pseudomonas aeruginosaATCC 10145
Staphylococcus aureusATCC 25923
Hafnia alveiATCC 13337
Salmonella typhimuriumATCC 14028
Helicobacter pyloriDSM 105471
Acremonium sp.Kolekcja LAMMC
Fusarium graminearumKolekcja LAMMC

Jak badano bakterie?

Zastosowano metodę dyfuzji w agarze z wykorzystaniem studzienek. Podłoże PCA zaszczepiono zawiesiną badanej bakterii, a próbkę koncentratu umieszczano w wykonanej w agarze studzience. Po inkubacji mierzono strefę wokół studzienki, w której wzrost bakterii był zahamowany.

  • Średnica studzienki: 8 mm.
  • Objętość próbki koncentratu: 50 µl.
  • Inkubacja w opisanej metodzie: 24 godziny, 37,0 ± 0,5°C.
  • Stężenie zawiesiny bakteryjnej użytej do zaszczepienia podłoża: 1 × 10⁶ jtk/ml.

Ostatnia wartość opisuje zawiesinę mikroorganizmu testowego — nie liczbę żywych kultur w butelce BIFIDO. Raport oblicza szerokość strefy według wzoru H = (D − d) / 2, gdzie D jest łączną średnicą studzienki i otaczającej ją strefy, a d — średnicą studzienki.

Szersza strefa oznacza większy zasięg zahamowania wzrostu w tym układzie. Nie jest procentem „usuniętych bakterii”. Wynik zależy również od właściwości podłoża i dyfuzji składników próbki.

Wyniki dla bakterii — konkretne obserwacje

  • Bacillus cereus: najwyższe wartości średnie w tabeli wynoszą 37,0 mm dla próbek ryżowej i malinowej; dla aroniowej 35,3 mm.
  • Escherichia coli: najwyższa średnia to 13,3 mm dla próbki aroniowej; pozostałe wynoszą od 8,7 do 11,7 mm.
  • Salmonella agona: najwyższa średnia to 14,0 mm dla próbki aroniowej.
  • Staphylococcus aureus: wyniki są zróżnicowane — od 1,0 mm dla próbki żytniej do 10,3 mm dla owsianej.
  • Helicobacter pylori: 0,0 mm dla wszystkich siedmiu próbek.
Średnie szerokości stref zahamowania wzrostu 16 bakterii dla siedmiu próbek BIFIDO
Polskie opracowanie tabeli 2, s. 6 raportu KTU (2024). Wartości średnie w mm; odchylenia standardowe pominięto na grafice. Schemat dotyczy wyników in vitro. Otwórz powiększony wykres.
Pełne wartości średnie dla 16 bakterii (mm)

Numery 1–7 odpowiadają wariantom wymienionym powyżej. Dla czytelności podano średnie bez odchyleń standardowych.

BakteriaPróbka: średnia (mm)
Micrococcus luteus1: 20,0; 2: 19,3; 3: 16,7; 4: 16,3; 5: 18,7; 6: 16,7; 7: 14,0
Bacillus cereus1: 34,3; 2: 37,0; 3: 14,3; 4: 37,0; 5: 35,3; 6: 32,0; 7: 7,7
Klebsiella pneumoniae1: 11,3; 2: 9,0; 3: 7,3; 4: 9,0; 5: 10,7; 6: 8,7; 7: 8,7
Enterobacter cloacae1: 7,0; 2: 8,7; 3: 4,3; 4: 1,0; 5: 4,7; 6: 4,0; 7: 4,3
Staphylococcus epidermidis1: 12,7; 2: 14,3; 3: 9,7; 4: 12,0; 5: 11,3; 6: 8,0; 7: 8,0
Bacillus subtilis subsp. spizizenii1: 10,0; 2: 12,0; 3: 7,3; 4: 7,3; 5: 10,7; 6: 8,0; 7: 8,0
Salmonella choleraesuis1: 8,0; 2: 6,3; 3: 4,3; 4: 9,7; 5: 12,0; 6: 7,3; 7: 6,3
Citrobacter freundii1: 9,3; 2: 17,0; 3: 9,7; 4: 12,7; 5: 12,3; 6: 9,7; 7: 6,3
Escherichia coli1: 11,0; 2: 11,0; 3: 10,7; 4: 11,3; 5: 13,3; 6: 11,7; 7: 8,7
Salmonella agona1: 10,0; 2: 9,0; 3: 8,7; 4: 12,7; 5: 14,0; 6: 10,0; 7: 8,7
Listeria monocytogenes1: 17,7; 2: 15,3; 3: 10,3; 4: 16,7; 5: 14,3; 6: 11,0; 7: 12,0
Pseudomonas aeruginosa1: 10,3; 2: 10,7; 3: 7,0; 4: 10,3; 5: 9,0; 6: 11,3; 7: 10,7
Staphylococcus aureus1: 10,3; 2: 2,0; 3: 8,0; 4: 9,0; 5: 5,0; 6: 8,0; 7: 1,0
Hafnia alvei1: 14,3; 2: 11,0; 3: 12,3; 4: 15,3; 5: 15,3; 6: 14,7; 7: 12,7
Salmonella typhimurium1: 9,7; 2: 7,0; 3: 3,7; 4: 7,3; 5: 9,3; 6: 6,3; 7: 7,7
Helicobacter pylori1: 0,0; 2: 0,0; 3: 0,0; 4: 0,0; 5: 0,0; 6: 0,0; 7: 0,0

Wniosek autorki raportu wyróżnia wariant aroniowy. Sama tabela pokazuje jednak, że nie ma jednego wariantu z najwyższą wartością dla wszystkich bakterii. Dlatego opisujemy konkretne wyniki, zamiast tworzyć ogólny ranking „najsilniejszych” produktów.

Jak badano grzyby?

Zastosowano metodę podwójnej kultury na podłożu PDA. Porównywano wzrost grzybni w próbie kontrolnej z jej wzrostem w obecności próbki koncentratu. W opisie podano krążek grzybni o średnicy 10 mm oraz krążki bibuły o średnicy 6 mm nasączone próbką, umieszczone w odległości 2,5 cm od grzyba.

Inkubację prowadzono w temperaturze 25,0 ± 0,5°C przez 7 dni lub do osiągnięcia brzegu płytki przez grzybnię w kontroli. Współczynnik zahamowania obliczano jako (a − b) / a × 100, gdzie a oznacza średnicę wzrostu w kontroli, a b — w próbie z koncentratem.

Wartość 39 oznacza więc w tym doświadczeniu zmniejszenie średnicy wzrostu o 39% względem kontroli. Nie oznacza zniszczenia 39% grzybów ani skuteczności u człowieka.

Wyniki dla grzybów: ważne jest rozróżnienie

W tabeli 3 najwyższy współczynnik dla Acremonium sp. ma próbka malinowa: 66 ± 0,7. Próbka żytnia osiąga 61 ± 0,7. Dla Fusarium graminearum najwyższa wartość to 39 ± 0,7 dla próbki żytniej.

Współczynniki zahamowania wzrostu Acremonium i Fusarium graminearum dla siedmiu próbek BIFIDO
Dane z tabeli 3, s. 10 raportu KTU (2024). Odcinki przy słupkach odpowiadają wartościom ± podanym w tabeli. Porównanie laboratoryjne z kontrolą. Otwórz powiększony wykres.
Współczynnik zahamowania wzrostu — tabela 3 raportu
WariantAcremonium sp.F. graminearum
Owsiany39 ± 0,718 ± 1,4
Ryżowy55 ± 025 ± 1,4
Pomarańczowy*59 ± 020 ± 1,4
Malinowy66 ± 0,77 ± 0,7
Aroniowy48 ± 0,720 ± 2,8
Miód, imbir, limonka52 ± 0,729 ± 0,7
Żytni61 ± 0,739 ± 0,7

Uwaga do źródła: opisowa część raportu wyróżnia wariant żytni wobec obu grzybów, natomiast tabela 3 wskazuje wyższą wartość próbki malinowej wobec Acremonium sp. Powyżej i na wykresie przedstawiamy liczby z tabeli, bez ich zmieniania.

Oryginalne zdjęcia z doświadczenia

Oryginalne płytki z raportu: Acremonium sp., kontrola i próba z wariantem malinowym
Raport KTU, s. 10, rys. 6 — wariant malinowy (próbka 4). Po lewej kontrola, po prawej próba z koncentratem. Oryginalne zdjęcie, bez zmiany zawartości.
Oryginalne płytki z raportu: Fusarium graminearum, kontrola i próba z wariantem żytnim
Raport KTU, s. 11, rys. 7 — wariant żytni (próbka 7). Po lewej kontrola, po prawej próba z koncentratem. Oryginalne zdjęcie, bez zmiany zawartości.

Co te wyniki mówią o BIFIDO?

Raport dokumentuje obserwacje dla konkretnych próbek BIFIDO: określa jednostkę badawczą, autorkę, materiał, metodę i wyniki liczbowe. To więcej informacji niż samo ogólne hasło „produkt przebadany”. Pokazuje również, że warianty nie dawały identycznych rezultatów, a jeden z badanych mikroorganizmów nie wykazał stref zahamowania wzrostu.

To charakterystyka laboratoryjna, nie badanie kliniczne. Metoda nie pozwala sama w sobie dowieść zabicia drobnoustrojów ani ustalić, która część składu próbki odpowiadała za obserwację. Nie wyznacza dawki leczniczej, nie potwierdza leczenia zakażeń i nie zastępuje zasad przechowywania z etykiety.

Poznaj produkty i sposób podania

BIFIDO to fermentowane koncentraty napojów z żywymi kulturami bakterii. W kategorii koncentratów BIFIDO możesz porównać aktualne warianty i ich skład. Wskazówki dotyczące porcji i podania znajdziesz na stronie Jak stosować BIFIDO?

Wybierając produkt, kieruj się także jego składem, smakiem i warunkami przechowywania. Wyników tego doświadczenia nie przedstawiamy jako obietnicy leczenia ani gwarancji określonego samopoczucia.

Źródło danych

Raport KTU, Wydział Technologii Chemicznej, Kaunas 2024; autorka: doc. dr Renata Žvirdauskienė. Polski opis tytułu: „Badania właściwości przeciwdrobnoustrojowych fermentowanych koncentratów napojów BIFIDO wobec bakterii i grzybów mikroskopowych”. Zakres i szczepy: s. 2; metody: s. 2–5; bakterie: tabela 2, s. 6; grzyby: tabela 3, s. 10; zdjęcia: rys. 6–7, s. 10–11. Więcej informacji: Badania laboratoryjne koncentratów BIFIDO.

Podobne wpisy